1.效率明顯低于貼壁細(xì)胞。

　　2.細(xì)胞不易培養(yǎng)，死亡率高。

　　3.轉(zhuǎn)染試劑毒性大，細(xì)胞死亡加劇這三種問題，為了提高懸浮細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率，可以使用毒性較小的非脂質(zhì)體的轉(zhuǎn)染試劑，也可以使用電轉(zhuǎn)染方法，提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率，電擊對細(xì)胞有一定的損傷，最好選用具有細(xì)胞膜修復(fù)功能的電轉(zhuǎn)染試劑，可以將電擊對細(xì)胞的傷害降到。

　　轉(zhuǎn)染過程中，操作步驟一定要謹(jǐn)慎。

　　以24孔板siRNA轉(zhuǎn)染為例

　　1.提前1天細(xì)胞種植

　　懸浮細(xì)胞：采用對數(shù)生長期的細(xì)胞，數(shù)量為常規(guī)培養(yǎng)細(xì)胞數(shù)的1/3進(jìn)行轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)。如某細(xì)胞常規(guī)培養(yǎng)的細(xì)胞數(shù)是6×10^5，那么就用2×10^5的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。

　　2.轉(zhuǎn)染過程

　?、湃?.67μg(50pmol)的siRNA，加入一定量無血清稀釋液，充分混勻，制成RNA稀釋液，終體積為25μl。

　　注意：無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。

　?、迫?μl的Entranster-R4000，然后加入24μl無血清稀釋液體，充分混勻，制成Entranster-R4000稀釋液，終體積為25μl。室溫靜置5分鐘。

　?、菍ntranster-R4000稀釋液和RNA稀釋液充分混合（可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上）混合，室溫靜置15分鐘。轉(zhuǎn)染復(fù)合物制備完成。

　　⑷將50μl轉(zhuǎn)染復(fù)合物滴加到有0.45ml全培養(yǎng)基（可含10%血清和抗生素）的細(xì)胞上，前后移動培養(yǎng)皿，混合均勻。

　　注意：對本試劑，采用含血清的全培養(yǎng)基有助于提升轉(zhuǎn)染效率。

　?、赊D(zhuǎn)染后6小時觀察細(xì)胞狀態(tài)，如狀態(tài)良好可不必更換培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)24-96小時得到結(jié)果。

　　注意：1.siRNA轉(zhuǎn)染后，繼續(xù)培養(yǎng)24-72小時在mRNA水平得到結(jié)果，繼續(xù)培養(yǎng)24-96小時在蛋白水平得到結(jié)果。mRNA轉(zhuǎn)染后，根據(jù)需要在24小時后得到結(jié)果。

　　2.在部分實(shí)驗(yàn)室，由于血清和培養(yǎng)條件等差異，轉(zhuǎn)染后鏡下培養(yǎng)基中可能出現(xiàn)少量黑點(diǎn)狀沉淀，為轉(zhuǎn)染試劑和血清中蛋白結(jié)合產(chǎn)物，不影響轉(zhuǎn)染結(jié)果和細(xì)胞狀態(tài)，可通過換液除去。

　　如遇轉(zhuǎn)染效果不佳，可采取優(yōu)化方案對實(shí)驗(yàn)進(jìn)行優(yōu)化：

　　1.優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括：轉(zhuǎn)染試劑的用量、DNA密度、細(xì)胞密度、試劑和DNA混合孵育時間等等。

　　2.同時細(xì)胞污染也是造成細(xì)胞死亡，轉(zhuǎn)染效率低下的一大原因。轉(zhuǎn)染細(xì)胞用的質(zhì)粒必須保證無菌。分享一個小秘訣：將提完質(zhì)粒后或者提的最后一步，用75％乙醇沉淀，這樣就除菌了。

　　3.轉(zhuǎn)染用的質(zhì)粒首先要保證數(shù)量，一般為2μg以上。如果質(zhì)粒純度不夠或者含有細(xì)菌LPS或其他對細(xì)胞有毒害作用的物質(zhì)，需要對質(zhì)粒進(jìn)行純化和濃縮。

　　4.一般進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。如果是貼壁細(xì)胞的話，貼壁率應(yīng)該在70-80%；如果是懸浮細(xì)胞的話，應(yīng)該是6×10^5個/孔（24孔板），一般是轉(zhuǎn)染前一天換液，轉(zhuǎn)染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細(xì)胞一次。