實驗原理
脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它適用于把DNA 轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前條件下方面的轉染方法之一。轉染率高,優(yōu)于磷酸鈣法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA轉染到各種細胞。
用LR進行轉染時,首先需要優(yōu)化轉染條件,應找出該批LR對轉染某一特定細胞適合的用量、作用時間等,對每批LR都要做。先要固定一個DNA的量和DNA/LR混合物與細胞相互作用的時間,DNA可從1-5ug和孵育時間6h,開始,按這兩個參數(shù)繪出相應LR需用量的曲線,再選用LR和DNA兩者的劑量,確定出轉染時間。因LR對細胞有一定的毒性,轉染時間以不超過24h為宜。
細胞種類:COS-7、BHK、NIH-3T3、Hela和Jurkat等任何一種細胞均可作為受體細胞。
實驗步驟
1. 操作步驟(方法一):
1) 取6孔培養(yǎng)板,向每孔中加入2ml含(1-2) x 105 個細胞的培養(yǎng)基,37℃、18% CO2 培養(yǎng)基40%-60%匯合時。
2) 轉染液制備:在聚苯乙烯管中制備以下兩液(為轉染1個空細胞所用的量)。
A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋DNA使?jié)舛葹?-10ug,終量100ul。
B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋LR,使終濃度為2-50ug,終量100ul。
輕輕混合A液、B液,室溫中置10-15min,稍后會出現(xiàn)微濁現(xiàn)象,但并不妨礙轉染。
3) 轉染準備:用2ml不含血清培養(yǎng)基漂洗2次,再加入1ml不含血清培養(yǎng)基。
4) 轉染:把A/B復合物緩緩加入培養(yǎng)基中,搖勻,置37℃溫箱中6-24h,吸除無血清轉染液,換入正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
5) 其余處理:如觀察、篩選、檢測等與其他轉染法相同。
6) 注意:轉染時切勿加血清,血清對轉染效率有很大影響。
2. 快速脂質體轉染法操作步驟(方法二):
1) 將細胞以5 x 105個/孔接種于6孔板中培養(yǎng)24h,使其達到50%-60%板底面積。
2) 在試管中配制DNA-脂質體復合物。
a. 在1ml無血清DMEM中稀釋PSV1-neo質粒DNA或供體DNA。
b. 旋轉1s,再加入脂質體懸液,旋轉。
c. 室溫下放置5-10min,使DNA結合在脂質體上。
3) 棄去細胞中的舊液,用1ml無血清DMEM洗細胞1次后棄去,向每孔中直接加入1mlDNA-脂質體復合物,37℃培養(yǎng)3-5天。
4) 再于每孔中加入含20%胎牛血清的DMEM,繼續(xù)培養(yǎng)14-24h。
5) 吸出DMEM-DNA-脂質體混合物加入新鮮含10%胎牛血清的DMEM,2ml/孔,再培養(yǎng)24-48h。
6) 用細胞刮或消化法收集細胞,以備分析鑒定。
3. 穩(wěn)定的脂質體轉染法:
1) 接種細胞同前述,細胞長至50%板底面積可用于轉染。
2) DNA-脂質體復合物制備轉染細胞同前。
3) 在每孔中加入1ml含20%胎牛血清的DMEM,37℃培養(yǎng)48h。
4) 吸出DMEM,用G418選擇性培養(yǎng)基稀釋細胞,使細胞生長 一定時間,篩選轉染克隆,方法參照細胞克隆篩選法進行。
4. Invitrogen公司的Lipofectamine2000在24孔板轉染單層貼壁細胞。(別的方法可以參考生產商提供的protocol)
1) 轉染前1天將0.5~2×105細胞接種于24孔培養(yǎng)板,并加入500ul不含抗生素 的*培養(yǎng)基,以保證轉染時細胞匯合達90~95%。
2) 準備復合物
a. 將0.8ug DNA稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中輕輕渾勻。
b. 將2ul Lipofectamine2000稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中,輕輕渾勻,室溫孵育5分。注意:必須在25分內進行。
c. 5分后將它們混合,并輕輕渾勻,室溫孵育20分。
3) 吸去培養(yǎng)板的培養(yǎng)基,用PBS或無血清培養(yǎng)基清洗細胞2次。
4) 將復合物(總體積100ul)加入培養(yǎng)孔,前后搖動培養(yǎng)板使其分布均勻。
5) 將細胞放入培養(yǎng)箱 孵育4~6h后,可以更換含血清培養(yǎng)液去除復合物(也可不用)。
6) 24~48h后可以觀察轉入基因表達 情況。
7) 穩(wěn)定轉染:換含血清培養(yǎng)基24h后將細胞以1:10(或更高比例)傳代,1天后更換篩選培養(yǎng)基篩選。